一、产品简介:
6-磷酸葡萄糖脱氢酶(G6PDH;EC 1.1.1.49)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是磷酸戊糖途径的关键酶,同时维持NADPH 在细胞内的水平,NADPH 反过来维持细胞中谷胱甘肽水平进而保护细胞免受氧化损伤。因此G6PDH 活性高低可以从一定程度上反映出生物体的生物合成和抗氧化能力。
G6PDH 催化6-磷酸葡萄糖氧化为6 -磷酸葡萄糖酸内酯,同时将NADP+还原为NADPH,传统方法是检测NADPH 在340nm 处的吸光值。由于NADPH 的摩尔消光系数(ε)较低,所以这种方法灵敏度低,且严重受到干扰。
本试剂盒提供一种简单,灵敏,快速的测定方法:该酶促过程产生的NADPH 与特异显色剂反应产生在
450nm 处有最大吸收峰的有色物质,通过检测450nm 处的增加速率,进而计算出G6PDH 酶活性大小。
试剂名称 | 规格 | 保存要求 | 备注 |
提取液 | 液体100mL×1 瓶 | 4℃保存 | |
试剂一 | 液体25mL×1 瓶 | 4℃保存 | |
试剂二 | 粉剂mg×1 瓶 | 4℃保存 | 临用前甩几下使粉体落入底部,再加入19mL 试剂一充分溶解,用不完的试剂4℃保存。 |
试剂三 | 液体1.1ml×EP 管 | 4℃保存 | |
标准品 | 粉剂mg×1 支 | -20℃保存 | 若重新做标曲,则用到该试剂。 |
三、所需的仪器和用品:
酶标仪、96 孔板、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、研钵、冰。
建议正式实验前选取2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
① 组织样本:称取约 0.1g 组织,加入1mL 提取液,进行冰浴匀浆。12000rpm 4℃离心15min,取上清,置冰上待测。
【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例提取。
② 细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取500 万细菌或细胞加入1mL 提取液;超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复 30 次);4ºC 约 12,000rpm 离心 10min,取上清作为待测样品。
【注】:若增加样本量,可按照细菌/细胞数量(104):提取液(mL)为500~1000:1 的比例进行提取。
③ 液体样本:直接检测。若浑浊,离心后取上清检测。
① 酶标仪预热 30min 以上,设置温度37℃,调节波长至450nm。
② 试剂放在 37℃水浴5-15min;在96 孔板中依次加入:
试剂名称(μL) | 测定管 |
样本 | 10 |
试剂二 | 180 |
试剂三 | 10 |
混匀,立即于450nm 处读取A1 值,于37℃条件下,20min 后读取 A2 值,(观察:酶活性越大,则黄色越明显) ΔA=A2-A1。 |
【注】:若ΔA 过小,可以延长反应时间(如:60min 或更长)再读取A2,或加大样本取样量(如
增加到0.2g),重新调整的反应时间T 需代入计算公式重新计算。
1、标准曲线方程:y =0.0804x-0.0003,x 是NADPH 摩尔质量:nmol,y 是ΔA。
2、按样本蛋白浓度计算:
单位定义:在37℃,每毫克组织蛋白每分钟使1 nmol 6-磷酸葡萄糖氧化成1 nmol 6 -磷酸葡萄糖酸内酯并且使1 nmol NADP+转换成1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。G6PDH(nmol/min /mg prot)=[(ΔA+0.0003)÷0.0804]÷ (V1×Cpr) ÷T=62.189×(ΔA+0.0003)÷Cpr
3、按样本鲜重计算:
单位定义:在37℃,每克组织每分钟使1 nmol 6-磷酸葡萄糖氧化成1 nmol 6 -磷酸葡萄糖酸内酯并且使1 nmol NADP+转换成1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
G6PDH(nmol /min /g 鲜重)=[(ΔA+0.0003)÷0.0804]÷(W× V1÷V) ÷T=62.189×(ΔA+0.0003)÷W
4、按细胞数量计算:
单位定义:在37℃,每104 个细胞每分钟使1 nmol 6-磷酸葡萄糖氧化成1 nmol 6 -磷酸葡萄糖酸内酯并且使1 nmol NADP+转换成1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
G6PDH(nmol /min /104 cell)=[(ΔA+0.0003)÷0.0804]÷(500×V1÷V)÷T= 0.1244×(△A+0.0003)
5、液体样本中G6PDH 活力计算:
单位定义:在37℃,每毫升液体每分钟使1 nmol 6-磷酸葡萄糖氧化成1 nmol 6 -磷酸葡萄糖酸内酯并且使1 nmol NADP+转换成1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。G6PDH(nmol/min /mL)=[(ΔA+0.0003)÷0.0804]÷V1÷T=62.189×(ΔA+0.0003)
V---加入提取液体积,1 mL; V1---加入样本体积,0.01 mL; W---样本质量,g。
T---反应时间,20 min;若加大了反应时间,则重新调整的反应时间值要代入公式重新计算;Cpr---样本蛋白质浓度,mg/mL;建议使用本公司的BCA 蛋白含量检测试剂盒。
附:标准曲线制作过程:
1 制备标准品母液(4nmol/μL):向标准品 EP 管里面加入 0.6mL 蒸馏水(母液需在两天内用且-20℃保存)。
2 把母液稀释成六个浓度梯度的标准品:0, 0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1. nmol/μL。也可根据实际样本来调整标准品浓度。
3 依据10μL 标准品+180μL 试剂一+10μL 试剂三,混匀后室温5min 后于450nm 处读值,根据结果即可制作标准曲线。